kpcczКомплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеванийComplex Issues of Cardiovascular Diseases2306-12782587-9537Federal State Budgetary Institution “Research Institute for Complex Issues of Cardiovascular Diseases”10.17802/2306-1278-2025-14-3-51-61kpccz-1648Research ArticleОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ. Патологическая физиология. Трансплантология и искусственные органыСПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ЖИЗНЕСПОСОБНОСТИ МЕЗЕНХИМАЛЬНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК В СОСТАВЕ ТКАНЕИНЖЕНЕРНЫХ КОНСТРУКТОВ В ПРОЦЕССЕ РЕГЕНЕРАЦИИ: ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ОБОСНОВАНИЕ ЭФФЕКТИВНОСТИMETHOD FOR DETERMINING THE VIABILITY OF MESENCHYMAL STEM CELLS IN TISSUE-ENGINEERED STRUCTURES DURING REGENERATION – EXPERIMENTAL SUBSTANTIATION OF EFFICIENCYhttps://orcid.org/0000-0002-8815-9651ЕгорихинаМарфа НиколаевнаEgorikhinaMarfa N.

кандидат биологических наук заведующая лабораторией клеточных технологий НИИ экспериментальной онкологии и биомедицинских технологий, заведующая лабораторией биотехнологий университетской клиники, ведущий научный сотрудник НИИ экспериментальной онкологии и биомедицинских технологий федерального государственного бюджетного образовательного учреждения высшего образования «Приволжский исследовательский медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Нижний Новгород, Российская Федерация

PhD, Senior Researcher of Laboratory of Regenerative Medicine in Institute of Biomedical Technologies of the Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education “Privolzhsky Research Medical University” of the Ministry of Health of the Russian Federation, Nizhny Novgorod, Russian Federation

egorihina.marfa@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0002-2781-6419РубцоваЮлия ПавловнаRubtsovaYulia P.

кандидат биологических наук научный сотрудник научной лаборатории клеточных технологий НИИ экспериментальной онкологии и биомедицинских технологий федерального государственного бюджетного образовательного учреждения высшего образования «Приволжский исследовательский медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Нижний Новгород, Российская Федерация

PhD, Researcher of Laboratory of Regenerative Medicine in Institute of Biomedical Technologies of the Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education “Privolzhsky Research Medical University” of the Ministry of Health of the Russian Federation, Nizhny Novgorod, Russian Federation

rubincherry@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0003-0866-7857ЧарыковаИрина НиколаевнаCharykovaIrina N.

биолог лаборатории биотехнологий университетской клиники федерального государственного бюджетного образовательного учреждения высшего образования «Приволжский исследовательский медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Нижний Новгород, Российская Федерация

Biologist at the Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education “Privolzhsky Research Medical University” of the Ministry of Health of the Russian Federation, Nizhny Novgorod, Russian Federation

irina-ch0709@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0003-3879-8460ЛиньковаДарья ДмитриевнаLinkovaDaria D.

младший научный сотрудник НИИ экспериментальной онкологии и биомедицинских технологий федерального государственного бюджетного образовательного учреждения высшего образования «Приволжский исследовательский медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Нижний Новгород, Российская Федерация

Junior Researcher of Laboratory of Regenerative Medicine in Institute of Biomedical Technologies of the Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education “Privolzhsky Research Medical University” of the Ministry of Health of the Russian Federation, Nizhny Novgorod, Russian Federation

linckovadaria@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0001-7940-0880ФарафонтоваЕкатерина АлександровнаFarafontovaEkaterina A.

лаборант научной лаборатории клеточных технологий НИИ экспериментальной онкологии и биомедицинских технологий федерального государственного бюджетного образовательного учреждения высшего образования «Приволжский исследовательский медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Нижний Новгород, Российская Федерация

Laboratory Assistant of Laboratory of Regenerative Medicine in Institute of Biomedical Technologies of the Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education “Privolzhsky Research Medical University” of the Ministry of Health of the Russian Federation, Nizhny Novgorod, Russian Federation

ekaterina_farafontova@mail.ruhttps://orcid.org/0009-0006-3807-1412ЛевичеваЕкатерина АндреевнаLevichevaEkaterina A.

лаборант научной лаборатории клеточных технологий НИИ экспериментальной онкологии и биомедицинских технологий федерального государственного бюджетного образовательного учреждения высшего образования «Приволжский исследовательский медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Нижний Новгород, Российская Федерация

Laboratory Assistant of Laboratory of Regenerative Medicine in Institute of Biomedical Technologies of the Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education “Privolzhsky Research Medical University” of the Ministry of Health of the Russian Federation, Nizhny Novgorod, Russian Federation

kate.lekat@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0003-1482-4281АлейникДиана ЯковлевнаAleinikDiana Ya.

кандидат медицинских наук старший научный сотрудник НИИ экспериментальной онкологии и биомедицинских технологий федерального государственного бюджетного образовательного учреждения высшего образования «Приволжский исследовательский медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Нижний Новгород, Российская Федерация

PhD, Senior Researcher of Laboratory of Regenerative Medicine in Institute of Biomedical Technologies of the Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education “Privolzhsky Research Medical University” of the Ministry of Health of the Russian Federation, Nizhny Novgorod, Russian Federation

daleynik@yandex.ruФедеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Приволжский исследовательский медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской ФедерацииРоссияFederal State Budgetary Educational Institution of Higher Education «Privolzhsky Research Medical University» of the Ministry of Health of the Russian FederationRussian Federation2025010720251435161Copyright © Егорихина М.Н., Рубцова Ю.П., Чарыкова И.Н., Линькова Д.Д., Фарафонтова Е.А., Левичева Е.А., Алейник Д.Я., 20252025Егорихина М.Н., Рубцова Ю.П., Чарыкова И.Н., Линькова Д.Д., Фарафонтова Е.А., Левичева Е.А., Алейник Д.Я.Egorikhina M.N., Rubtsova Y.P., Charykova I.N., Linkova D.D., Farafontova E.A., Levicheva E.A., Aleinik D.Y.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1648Основные положения

Основные положения

Предложен способ определения жизнеспособности мезенхимальных стволовых клеток в составе тканеинженерных конструктов, который может стать эффективным инструментом регенеративной медицины и тканевой инженерии для оценки механизмов регенеративного процесса при использовании данных конструктов и прогнозировании их эффективности в системе in vitro.

 

 

Резюме

Резюме

Цель

Цель. Экспериментальное обоснование эффективности способа определения жизнеспособности мезенхимальных стволовых клеток в составе тканеинженерных конструктов (ТИК) в процессе регенерации.

Материалы и методы

Материалы и методы. Экспериментальное исследование проведено на 12 животных (самцы крыс). Животным формировали полнослойную скальпированную рану диаметром 3 см. В рану имплантировали ТИК на основе криопреципитата плазмы крови человека, в состав которого вводили суспензию мезенхимальных стволовых клеток (МСК) крыс, предварительно окрашенных трейсером DiOC14(3). В контрольные сроки (3, 7–8, 14 и 21-е сутки) животные были выведены из эксперимента. В ходе операции вырезалась область раневого дефекта для проведения ex tempore исследования методом широкопольной флуоресцентной микроскопии с визуализацией образцов с 40, 100 и 200-кратным увеличением по GFP-каналу флуоресценции.

Результаты

Результаты. При исследовании материала, полученного от животных на 3-и сутки, внешние характеристики подавляющего большинства выявленных объектов с флуоресцентным свечением соответствовали морфологическим характеристикам МСК – веретенообразные клетки с характерными отростками. В материале, полученном от экспериментальных животных на 7–8 сутки, также выявляли большое количество клеток, окрашенных трассирующим флуоресцентным мембранным красителем, которые имели зеленое флуоресцентное свечение и характерную морфологию. В биоматериале, полученном на 14 сутки эксперимента, количество объектов с характерной для МСК морфологией, окрашенных трейсером DiOC14(3), значительно меньше, чем на 3 и 7–8 сутки эксперимента. На 21 сутки также детектировали сигнал, специфический для трейсера DiOC14(3), однако визуализировать хотя бы единичные клетки с характерной для МСК морфологией не удалось, вероятно, сигнал был обусловлен фрагментами мембран, элиминированных МСК, меченных флуоресцентным красителем.

Заключение

Заключение. Показано, что МСК в имплантированном на рану животного ТИК сохраняют жизнеспособность и характерную морфологию как минимум в течение 14 суток. Важно, что предложенный способ позволяет прижизненно визуализировать и фотофиксировать жизнеспособные МСК с характерной морфологией, и таким образом, избежать искажений, которые могут быть связаны с фиксацией биологического материала. Предложенный способ может стать эффективным инструментом регенеративной медицины и тканевой инженерии в отношении оценки механизмов регенеративного процесса при использовании ТИК и прогнозирования их эффективности в системе in vitro.

Highlights

Highlights

The method for determining the viability of mesenchymal stem cells in the composition of tissue-engineering constructs is proposed here. This method can become an effective tool for regenerative medicine and tissue engineering for assessing the mechanisms of the regenerative process when using tissue-engineered constructs and predicting their effectiveness in an in vitro system.

 

 

Abstract

Abstract

Aim

Aim. Еxperimental substantiation of the efficiency of the method for determining the viability of mesenchymal stem cells in tissue-engineered constructs during regeneration

Methods

Methods. The experimental study was conducted on 12 animals (rats). A full-layer scalped wound with a diameter of 3 cm was formed in the animals. A tissue-engineering construct based on human plasma cryoprecipitate was implanted into the wound, with the composition of which a suspension of rat mesenchymal stem cells (MSCs) pre-stained with the DiOC14(3) tracer was introduced. At the control periods (3, 7–8, 14 and 21 days), the animals were withdrawn from the experiment. During the operation, the wound defect area was cut out for ex-tempore examination using wide-field fluorescence microscopy with visualization of samples with 40×, 100×, 200× magnification in the GFP fluorescence channel.

Results

Results. When examining the material obtained from animals on day 3, the external characteristics of the overwhelming majority of identified objects with characteristic fluorescent glow corresponded to the morphological characteristics of MSCs – spindle-shaped cells with characteristic processes. In the material obtained from experimental animals on days 7–8, a large number of cells stained with a tracer fluorescent membrane dye were also detected, which had a green fluorescent glow and characteristic morphology. In the biomaterial obtained on day 14 of the experiment, the number of objects with characteristic MSC morphology stained with the DiOC14(3) tracer was significantly less than on days 3 and 7–8 of the experiment. On day 21, a signal specific for the DiOC14(3) tracer was also detected, but it was not possible to visualize even single cells with the morphology characteristic of MSCs; the signal was probably due to fragments of membranes of eliminated MSCs labeled with a fluorescent dye.

Conclusion

Conclusion. It was shown that MSCs in tissue-engineering constructs implanted on the animal wound retain viability and characteristic morphology for at least 14 days. It is important that the proposed method allows intravital visualization and photofixation of viable MSCs with characteristic morphology, and thus avoiding distortions that may be associated with fixation of biological material. The proposed method can become an effective tool for regenerative medicine and tissue engineering in relation to assessing the mechanisms of the regenerative process using TECs and predicting their effectiveness in the in vitro system.

Тканеинженерный конструктТрейсер DiOC14(3)Мезенхимальные стволовые клеткиЖизнеспособностьМорфологияИмиджингTissue-engineered constructDiOC14(3) tracerMesenchymal stem cellsViabilityMorphologyImagingРабота выполнена в рамках программы «Приоритет-2036» Министерства науки и высшего образования Российской Федерации.ReferencesФайзуллин А.Л., Шехтер А.Б., Истранов Л.П., Истранова Е.В., Руденко Т.Г., Гуллер А.Е., Абоянц Р.К., Тимашев П.С., Бутнару Д.В. Биорезорбируемые коллагеновые материалы в хирургии: 50 лет успеха. Сеченовский вестник. 2020; 11(1): 59–70. doi.org/10.47093/2218-7332.2020.11.1.59-70Fayzullin A.L., Shekhter A.B., Istranov L.P., Istranova E.V., Rudenko T.G., Guller A.E., Aboyants R.K.,Bian D., Wu Y., Song G., Azizi R., Zamani A. The application of mesenchymal stromal cells (MSCs) and their derivative exosome in skin wound healing: a comprehensive review. Stem Cell Res Ther. 2022;13(1):1-17. doi:10.1186/s13287-021-02697-9Timashev P.S., Butnaru D.V. Bioresorbable collagen materials in surgery: 50 years of success. Sechenov Medical Journal. 2020;11(1): 59–70. doi.org/10.47093/2218-7332.2020.11.1.59-70 (In Russian)Heldring N., Mäger I., Wood M.J.A., Le Blanc K, Andaloussi S.E.L. Therapeutic Potential of Multipotent Mesenchymal Stromal Cells and Their Extracellular Vesicles. Hum Gene Ther. 2015;26(8):506-517. doi:10.1089/hum.2015.072Bian D., Wu Y., Song G., Azizi R., Zamani A. The application of mesenchymal stromal cells (MSCs) and their derivative exosome in skin wound healing: a comprehensive review. Stem Cell Res Ther. 2022;13(1):1-17. doi:10.1186/s13287-021-02697-9Gomzikova M.О., James V., Rizvanov A. A. Therapeutic Application of Mesenchymal Stem Cells Derived Extracellular Vesicles for Immunomodulation. Front Immunol. 2019;10(November):1-9. doi:10.3389/fimmu.2019.02663Heldring N., Mäger I., Wood M.J.A., Le Blanc K, Andaloussi S.E.L. Therapeutic Potential of Multipotent Mesenchymal Stromal Cells and Their Extracellular Vesicles. Hum Gene Ther. 2015;26(8):506-517. doi:10.1089/hum.2015.072Dedier M., Magne B., Nivet M., Banzet S., Trouillas M. Anti-inflammatory effect of interleukin-6 highly enriched in secretome of two clinically relevant sources of mesenchymal stromal cells. Front Cell Dev Biol. 2023;11(September):1-8. doi:10.3389/fcell.2023.1244120Gomzikova M.О., James V., Rizvanov A. A. Therapeutic Application of Mesenchymal Stem Cells Derived Extracellular Vesicles for Immunomodulation. Front Immunol. 2019;10(November):1-9. doi:10.3389/fimmu.2019.02663Mendt M., Rezvani K., Shpall E. Mesenchymal stem cell-derived exosomes for clinical use. Bone Marrow Transplant. 2019;54:789-792. doi:10.1038/s41409-019-0616-zDedier M., Magne B., Nivet M., Banzet S., Trouillas M. Anti-inflammatory effect of interleukin-6 highly enriched in secretome of two clinically relevant sources of mesenchymal stromal cells. Front Cell Dev Biol. 2023;11(September):1-8. doi:10.3389/fcell.2023.1244120Lotfy A., AboQuella N.M., Wang H. Mesenchymal stromal/stem cell (MSC)-derived exosomes in clinical trials. Stem Cell Res Ther. 2023;14(1):1-18. doi:10.1186/s13287-023-03287-7Mendt M., Rezvani K., Shpall E. Mesenchymal stem cell-derived exosomes for clinical use. Bone Marrow Transplant. 2019;54:789-792. doi:10.1038/s41409-019-0616-zLin Y., Marin-Argany M., Dick C.J., Redhage K.R., Blancas-Mejia L.M., Bulur P., Butler G.W., Deeds M.C., Madden B.J., Williams A., Wall J.S., Dietz A., Ramirez-Alvarado M. Mesenchymal stromal cells protect human cardiomyocytes from amyloid fibril damage. Cytotherapy. 2017;19(12). doi:10.1016/j.jcyt.2017.08.021Lotfy A., AboQuella N.M., Wang H. Mesenchymal stromal/stem cell (MSC)-derived exosomes in clinical trials. Stem Cell Res Ther. 2023;14(1):1-18. doi:10.1186/s13287-023-03287-7Hashemi S.S., Pourfath M.R., Derakhshanfar A., Behzad-Behbahani A., Moayedi J. The role of labeled cell therapy with and without scaffold in early excision burn wounds in a rat animal model. Iran J Basic Med Sci. 2020;23(5):673-679. doi:10.22038/ijbms.2020.34324.8156Lin Y., Marin-Argany M., Dick C.J., Redhage K.R., Blancas-Mejia L.M., Bulur P., Butler G.W., Deeds M.C., Madden B.J., Williams A., Wall J.S., Dietz A., Ramirez-Alvarado M. Mesenchymal stromal cells protect human cardiomyocytes from amyloid fibril damage. Cytotherapy. 2017;19(12). doi:10.1016/j.jcyt.2017.08.021Marino G., Moraci M., Armenia E., Orabona C., Sergio R., De Sena G., Capuozzo V., Barbarisi M., Rosso F., Giordano G., Iovino F., Barbarisi A. Therapy with autologous adipose-derived regenerative cells for the care of chronic ulcer of lower limbs in patients with peripheral arterial disease. J Surg Res. 2013 Nov;185(1):36-44. doi: 10.1016/j.jss.2013.05.024Hashemi S.S., Pourfath M.R., Derakhshanfar A., Behzad-Behbahani A., Moayedi J. The role of labeled cell therapy with and without scaffold in early excision burn wounds in a rat animal model. Iran J Basic Med Sci. 2020;23(5):673-679. doi:10.22038/ijbms.2020.34324.8156Зиновьев Е.В., Крайнюков П.Е., Асадулаев М.С., Костяков Д.В., Вагнер Д.О., Крылов П.К., Османов К.Ф. Клиническая оценка эффективности применения мезенхимальных стволовых клеток при термических ожогах Вестник Национального медико-хирургического Центра им. Н.И. Пирогова 2018;13(4): 62-67. doi:10.25881/bpnmsc.2018.88.91.011Marino G., Moraci M., Armenia E., Orabona C., Sergio R., De Sena G., Capuozzo V., Barbarisi M., Rosso F., Giordano G., Iovino F., Barbarisi A. Therapy with autologous adipose-derived regenerative cells for the care of chronic ulcer of lower limbs in patients with peripheral arterial disease. J Surg Res. 2013 Nov;185(1):36-44. doi: 10.1016/j.jss.2013.05.024Еремеев А.В., Пикина А.С., Владимирова Т.В., Богомазова А.Н. Методы оценки жизнеспособности клеток, культивируемых in vitro в 2D- и 3D-структурах. Гены и клетки. 2023;18(1):5-21. doi:10.23868/gc312198Zinovev E.V., Krajnjukov P.E., Asadulaev M.S., Kostyakov D.V., Wagner D.O., Krylov P.K., Osmanov K.F. Clinical Assessment of the Efficiency of the Use of Mesenchimal Stem Cells in Thermal Burns. Bull Pirogov Natl Med Surg Cent. 2018;13(4):62-67. doi:10.25881/bpnmsc.2018.88.91.011 (In Russian)Kamiloglu S., Sari G., Ozdal T., Capanoglu E. Guidelines for cell viability assays. Food Front. 2020;1(3):332-349. doi:10.1002/fft2.44Eremeev A.V., Pikina A.S., Vladimirova T.V., Bogomazova A.N. Methods for assessing the viability of cells cultured in vitro in 2D and 3D structures Genes & cells 2023;18(1):5-21. doi:10.23868/gc312198 (In Russian)Debruyne A.C., Okkelman I.A., Dmitriev R.I. Balance between the cell viability and death in 3D. Semin Cell Dev Biol. 2023;144:55-66. doi:10.1016/J.SEMCDB.2022.09.005Kamiloglu S., Sari G., Ozdal T., Capanoglu E. Guidelines for cell viability assays. Food Front. 2020;1(3):332-349. doi:10.1002/fft2.44Gantenbein-Ritter B., Potier E., Zeiter S., van der Werf M., Sprecher C.M., Ito K. Accuracy of three techniques to determine cell viability in 3D tissues or scaffolds. Tissue Eng - Part C Methods. 2008;14(4):353-358. doi:10.1089/ten.tec.2008.0313Debruyne A.C., Okkelman I.A., Dmitriev R.I. Balance between the cell viability and death in 3D. Semin Cell Dev Biol. 2023;144:55-66. doi:10.1016/J.SEMCDB.2022.09.005Dominijanni A.J., Devarasetty M., Forsythe S.D., Votanopoulos K.I., Soker S. Cell Viability Assays in Three-Dimensional Hydrogels: A Comparative Study of Accuracy. Tissue Eng - Part C Methods. 2021;27(7):401-410. doi:10.1089/ten.tec.2021.0060Gantenbein-Ritter B., Potier E., Zeiter S., van der Werf M., Sprecher C.M., Ito K. Accuracy of three techniques to determine cell viability in 3D tissues or scaffolds. Tissue Eng - Part C Methods. 2008;14(4):353-358. doi:10.1089/ten.tec.2008.0313Dittmar R., Potier E., van Zandvoort M., Ito K. Assessment of cell viability in three-dimensional scaffolds using cellular auto-fluorescence. Tissue Eng - Part C Methods. 2012;18(3):198-204. doi:10.1089/ten.tec.2011.0334Dominijanni A.J., Devarasetty M., Forsythe S.D., Votanopoulos K.I., Soker S. Cell Viability Assays in Three-Dimensional Hydrogels: A Comparative Study of Accuracy. Tissue Eng - Part C Methods. 2021;27(7):401-410. doi:10.1089/ten.tec.2021.0060Bonnier F., Keating M.E., Wróbel T.P., Majzner K., Baranska M., Garcia-Munoz A., Blanco A., Byrne H.J. Cell viability assessment using the Alamar blue assay: a comparison of 2D and 3D cell culture models. Toxicol In vitro. 2015;29(1):124-31. doi: 10.1016/j.tiv.2014.09.014Dittmar R., Potier E., van Zandvoort M., Ito K. Assessment of cell viability in three-dimensional scaffolds using cellular auto-fluorescence. Tissue Eng - Part C Methods. 2012;18(3):198-204. doi:10.1089/ten.tec.2011.0334Семенычева Л.Л., Кузнецова Ю.Л., Валетова, Н.Б., Гераськина Е.В., Таранкова О.А. Способ получения уксусной дисперсии высокомолекулярного рыбного коллагена. Патент RU2567171C1, 2015; Бюл. №31Bonnier F., Keating M.E., Wróbel T.P., Majzner K., Baranska M., Garcia-Munoz A., Blanco A., Byrne H.J. Cell viability assessment using the Alamar blue assay: a comparison of 2D and 3D cell culture models. Toxicol In vitro. 2015;29(1):124-31. doi: 10.1016/j.tiv.2014.09.014Коржевский Д.Э., Гиляров А.В. Основы гистологической техники. Практическое руководство. СПб: СпецЛит; 2010. 95 с.Semenycheva, L.L.; Kuznetsova, J.L.; Valetova, N.B.; Geras’kina, E.V.; Tarankova, O.A. Method for production of acetic dispersion of high molecular fish collagen. Patent. RU2567171? 2015; Bull. №31 (In Russian)Guo S., Dipietro L.A. Factors affecting wound healing. J Dent Res. 2010;89(3):219-229. doi:10.1177/0022034509359125Korzhevskij D.Je., Giljarov A.V. Osnovy gistologicheskoj tehniki. Prakticheskoe rukovodstvo. Saint Petersburg: SpecLit; 2010. (In Russian)Gonzalez A.C., Costa T.F., Andrade Z.A., Medrado A.R. Wound healing - A literature review. An Bras Dermatol. 2016;91(5):614-620. doi: 10.1590/abd1806-4841.20164741Guo S., Dipietro L.A. Factors affecting wound healing. J Dent Res. 2010;89(3):219-229. doi:10.1177/0022034509359125Юрова К.А., Мелащенко Е.С., Хазиахматова О.Г., Малащенко В.В., Мелащенко О.Б., Шунькин Е.О., Норкин И.К., Хлусов И.А., Литвинова Л.С. Мезенхимные стволовые клетки: краткий обзор классических представлений и новых факторовостеогенной дифференцировки (PDF) Мезенхимальные стволовые клетки: краткий обзор концепций классификации и новых факторов остеогенной дифференцировки. Медицинская иммунология, 2021;23(2):207-222. doi:10.15789/1563-0625-MSC-2128Gonzalez A.C., Costa T.F., Andrade Z.A., Medrado A.R. Wound healing - A literature review. An Bras Dermatol. 2016;91(5):614-620. doi: 10.1590/abd1806-4841.20164741Макаревич П.И. Клеточные пласты из мультипотентных мезенхимных стромальных клеток как платформа для тканевой инженерии в регенеративной медицине. Дисс. …д.м.н. М; 2024.Yurova K.A., Melashchenko E.S., Khasiakhmatova O.G., Malashchenko V.V., Melashchenko O.B., Shunkin E.O., Norkin I.K., Khlusov I.A., Litvinova L.S. Mesenchymal stem cells: A brief review of classis concepts and new factors of osteogenic differentiation. Med Immunol. 2021;23(2):207-222. doi:10.15789/1563-0625-MSC-2128 (In Russian)Nourian Dehkordi A., Mirahmadi Babaheydari F., Chehelgerdi M., Raeisi Dehkordi S. Skin tissue engineering: wound healing based on stem-cell-based therapeutic strategies. Stem Cell Res Ther. 2019;10(1):111. doi: 10.1186/s13287-019-1212-2Makarevich P.I. Kletochnye plasty iz mul'tipotentnyh mezenhimnyh stromal'nyh kletok kak platforma dlja tkanevoj inzhenerii v regenerativnoj medicine. [dissertation]; Moscow; 2024 (In Russian)Воротников А.В., Суздальцева Ю.Г., Рубцов Ю.П., Аниол Н.В., Горюнов К.В., Кудряшова Т.В., Тюрин-Кузьмин П.А., Ткачук В.А. Направленная миграция и мезенхимальные прогениторные клетки: участие в воспалении, репарации и регенерации ткани. В сборнике: Стволовые клетки и регенеративная медицина под ред. В.А Ткачука. М: Макс-пресс; 2012.Nourian Dehkordi A., Mirahmadi Babaheydari F., Chehelgerdi M., Raeisi Dehkordi S. Skin tissue engineering: wound healing based on stem-cell-based therapeutic strategies. Stem Cell Res Ther. 2019;10(1):111. doi: 10.1186/s13287-019-1212-2Бехало В.А., Горская Ю.Ф., Нестеренко В.Г. Иммунорегуляторный и иммунотерапевти-ческий потенциал мезенхимальных стволовых/стромальных клеток: перспективы и проблемы. Иммунология. 2024; 45 (3): 385–395. doi:10.33029/1816-2134-2024-45-3-385-395Vorotnikov A. V., Suzdal'ceva Ju. G., Rubcov Ju. P., Aniol N. V., Gorjunov K. V., Kudrjashova T. V., Tjurin-Kuz'min P. A., Tkachuk V. A. Napravlennaja migracija i mezenhimal'nye progenitornye kletki: uchastie v vospalenii, reparacii i regeneracii tkani. In Stvolovye kletki i regenerativnaja medicina. Editor V.A Tkachuka. Moscow: Maks-press; 2012 (In Russian)Bekhalo V.A., Gorskaya Yu.F., Nesterenko V.G. Immunoregulatory and immunotherapeutic potential of mesenchymal stem/stromal cells: prospects and problems. Immunologiya. 2024;45(3):385-395. doi:10.33029/1816-2134-2024-45-3-385-395 (In Russian)Bekhalo V.A., Gorskaya Yu.F., Nesterenko V.G. Immunoregulatory and immunotherapeutic potential of mesenchymal stem/stromal cells: prospects and problems. Immunologiya. 2024;45(3):385-395. doi:10.33029/1816-2134-2024-45-3-385-395 (In Russian)

The authors declare that there are no conflicts of interest present.