Preview

Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний

Расширенный поиск

Получение клеточных суспензий артерий при атеросклерозе

https://doi.org/10.17802/2306-1278-2020-9-2-114-122

Полный текст:

Аннотация

Ключевым этапом в исследованиях, направленных на изучение роли отдельных типов клеток в функционировании артерий человека in vivo как в норме, так и при поражении атеросклерозом, является получение суспензии клеток из стенки кровеносного сосуда. К настоящему времени разработан ряд подходов к дезагрегации артерий. В обзоре систематизированы опубликованные ранее данные и методики, представлен алгоритм оптимизации процедуры дезагрегации артерий, а также описаны возникающие проблемы и способы их решения.

Об авторах

Д. В. Шарыш
Научно-исследовательский институт медицинской генетики федерального государственного бюджетного научного учреждения Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

Шарыш Диана Владимировна - аспирант, лаборант-исследователь лаборатории.

Набережная реки Ушайки, 10, Томск, 634050



А. В. Марков
Научно-исследовательский институт медицинской генетики федерального государственного бюджетного научного учреждения Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

Марков Антон Владимирович - кандидат медицинских наук, научный сотрудник лаборатории.

Набережная реки Ушайки, 10, Томск, 634050



М. С. Назаренко
Научно-исследовательский институт медицинской генетики федерального государственного бюджетного научного учреждения Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

Назаренко Мария Сергеевна - доктор медицинских наук, руководитель лаборатории.

Набережная реки Ушайки, 10, Томск, 634050



Список литературы

1. Tabas I., Garda-Cardena G., Owens G.K. Recent insights into the cellular biology of atherosclerosis. J Cell Biol. 2015;209(1):13. doi: 10.1083/jcb.201412052.

2. Gimbrone M.A., Garda-Cardena G. Endothelial Cell Dysfunction and the Pathobiology ofAtherosclerosis. Circ Res. 2016 Feb 19;118(4):620—36. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.n5.306301

3. Bennett M.R., Sinha S., Owens G.K. Vascular smooth muscle cells in atherosclerosis. Circ Res. 2016 Feb 19;118(4):692-702. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.n5.306361

4. Gross A., Schoendube J., Zimmermann S., Steeb M., Zengerle R. , Koltay P. Technologies for Single-Cell Isolation. Int J Mol Sci. 2015 Aug; 16(8): 16897-919. doi: 10.3390/ijms160816897.

5. Hu P., Zhang W., Xin H., Deng G. Single Cell Isolation and Analysis. Front Cell Dev Biol [Internet]. 2016 Oct 25 [cited 2019 May 10];4. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5078503/

6. Worthington Tissue Dissociation Guide [Internet]. [cited 2019 May 10]. Available from: http://www.worthington-biochem.com/tissuedissociation/basic.html

7. Galkina E., Kadl A., Sanders J., Varughese D., Sarembock I.J., Ley K. Lymphocyte recruitment into the aortic wall before and during development of atherosclerosis is partially L-selectin dependent. J Exp Med. 2006 May 15;203(5):1273-82. doi: 10.1084/jem.20052205

8. Kwartler C., Zhou P., Kuang S.-Q., Duan X.-Y., Gong L., Milewicz D. Vascular Smooth Muscle Cell Isolation and Culture from Mouse Aorta. BIO-Protoc [Internet]. 2016 [cited 2019 May 10];6(23). Available from: https://bio-protocol.org/e2045

9. Grivel J.-C., Ivanova O., Pinegina N., Blank P.S., Shpektor A. , Margolis L.B., Vasilieva E. Activation of t lymphocytes in atherosclerotic plaques. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2011 Dec;31(12):2929-37. doi: 10.1161/ATVBAHA.111.237081

10. Tang J., Lobatto M.E., Hassing L., van der Staay S., van Rijs S. M., Calcagno C., Braza M.S., Baxter S., Fay F., Sanchez-Gaytan B. L., Duivenvoorden R., Sager H.B., Astudillo YM., Leong W., Ramachandran S., Storm G., Perez-Medina C., Reiner T., Cormode D.P., Strijkers G.J., Stroes E.S.G., Swirski F.K., Nahrendorf M., Fisher E.A., Fayad Z.A., Mulder W.J.M. Inhibiting macrophage proliferation suppresses atherosclerotic plaque inflammation. Sci Adv [Internet]. 2015 Apr 3 [cited 2019 May 10];1(3). Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4539616/

11. Sternberg Z., Ghanim H., Gillotti K.M., Tario J.D., Munschauer F., Curl R., Noor S., Yu J., Ambrus J.L., Wallace P., Dandona P. Flow cytometry and gene expression profiling of immune cells of the carotid plaque and peripheral blood. Atherosclerosis. 2013 Aug;229(2):338-47. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2013.04.035.

12. Nikolic D.M., Djordjevic P.B., Sreckovic V.D., Paunovic I. , Kalezic N., Popovic S., Nikolic B., Stefanovic D. Comparative analysis of collagenase XI and liberase H1 for the isolation of human pancreatic islets. Hepatogastroenterology. 2010 Dec;57(104):1573-8.

13. Danoviz M.E., Yablonka-Reuveni Z. Skeletal Muscle Satellite Cells: Background and Methods for Isolation and Analysis in a Primary Culture System. Methods Mol Biol Clifton Nj. 2012;798:21-52. doi: 10.1007/978-1-61779-343-1_2

14. Miersch C., Stange K., Rontgen M. Effects of trypsinization and of a combined trypsin, collagenase, and DNase digestion on liberation and in vitro function of satellite cells isolated from juvenile porcine muscles. Vitro Cell Dev Biol - Anim. 2018 Jun 1;54(6):406-12. doi: 10.1007/s11626-018-0263-5.

15. Lockhart R.A., Hakakian C. S., Aronowitz J. A. Tissue Dissociation Enzymes for Adipose Stromal Vascular Fraction Cell Isolation: A Review. J Stem Cell Res Ther [Internet]. 2015 [cited 2019 May 10];5(12). Available from: https://www.omicsonline.org/open-access/tissue-dissociation-enzymes-for-adipose-stromal-vascular-fraction-cellisolation-a-review-2157-7633-1000321.php?aid=66045

16. Botting R.A., Bertram K.M., Baharlou H., Sandgren K.J., Fletcher J. , Rhodes J.W., Rana H., Plasto TM, Wang XM, Lim JJK, Barnouti L, Kohout MP, Papadopoulos T, Merten S, Olbourne N., Cunningham A.L., Haniffa M., Harman A.N. Phenotypic and functional consequences of different isolation protocols on skin mononuclear phagocytes. J Leukoc Biol. 2017 Jun; 101(6): 1393-403. doi: 10.1189/jlb.4A1116-496R.

17. Mattsson L., Bondjers G., Wiklund O. Isolation of cell populations from arterial tissue, using monoclonal antibodies and magnetic microspheres. Atherosclerosis. 1991 Jul;89(1):25-34. doi: 10.1016/0021-9150(91)90004-m.

18. Patino W.D., Kang J.G., Matoba S., Mian O.Y, Gochuico B.R., Hwang P.M. Atherosclerotic plaque macrophage transcriptional regulators are expressed in blood and modulated by tristetraprolin. Circ Res. 2006 May;98(10):1282-9. doi:10.1161/01.RES.0000222284.48288.28

19. Kobayashi M., Inoue K., Warabi E., Minami T., Kodama T. A Simple Method of Isolating Mouse Aortic Endothelial Cells. J Atheroscler Thromb. 2005;12(3):138-42. doi:10.5551/jat.12.138

20. Beigi F., Patel M., Morales-Garza M.A., Winebrenner C., Gobin A.S., Chau E., Sampaio L.C., Taylor D.A. Optimized method for isolating highly purified and functional porcine aortic endothelial and smooth muscle cells. J Cell Physiol. 2017 Nov;232(11):3139-45. doi: 10.1002/jcp.25764.

21. Bonanno E., Mauriello A., Partenzi A., Anemona L., Spagnoli L.G. Flow cytometry analysis of atherosclerotic plaque cells from human carotids: a validation study. Cytometry. 2000;39(2):158-65. doi: 10.1002/(sici)1097-0320(20000201)39:2<158::aid-cyto9>3.0.co;2-8.

22. Galis Z.S., Sukhova G.K., Kranzhofer R., Clark S., Libby P. Macrophage foam cells from experimental atheroma constitutively produce matrix-degrading proteinases. Proc Natl Acad Sci U S A. 1995;92(2):402-6. doi: 10.1073/pnas.92.2.402.

23. Fernandez D.M., RahmanA.H., Fernandez N.F., Chudnovskiy A., Amir E.D., Amadori L., Khan N.S., Wong C.K., Shamailova R., Hill C.A., Wang Z., Remark R., Li J.R., Pina C., Faries C., Awad A.J., Moss N., Bjorkegren J.L.M., Kim-Schulze S., Gnjatic S., Ma’ayan A., Mocco J., Faries P., Merad M., Giannarelli C. Singlecell immune landscape of human atherosclerotic plaques. Nat Med. 2019 Oct;25(10):1576-88. doi:10.1038/s41591-019-0590-4

24. Meekel J.P., Groeneveld M.E., Bogunovic N., Keekstra N., Musters R.J.P., Zandieh-Doulabi B., Pals G., Micha D., Niessen H.W.M., Wiersema A.M., Kievit J.K., Hoksbergen A.W. J., Wisselink W., Blankensteijn J.D., Yeung K.K. An in vitro method to keep human aortic tissue sections functionally and structurally intact. Sci Rep. 2018 May 25;8(1):8094. doi:10.1038/s41598-018-26549-4

25. Moss S.C., Bates M., Parrino P.E., Woods T.C. Isolation of Endothelial Cells and Vascular Smooth Muscle Cells from Internal Mammary Artery Tissue. Ochsner J. 2007;7(3):133-6.

26. Dobnikar L., Taylor A.L., Chappell J., Oldach P., Harman J. L., Oerton E., Dzierzak E., Bennett M.R., Spivakov M., J0rgensen H.F. Disease-relevant transcriptional signatures identified in individual smooth muscle cells from healthy mouse vessels. Nat Commun. 2018 Dec;9(1):4567.

27. Cochain C., Vafadarnejad E., Arampatzi P., Pelisek J., Winkels H., Ley K., Wolf D., Saliba A.-E., Zernecke A. Single-Cell RNA-Seq Reveals the Transcriptional Landscape and Heterogeneity of Aortic Macrophages in Murine Atherosclerosis. Circ Res. 2018 Jun 8;122(12):1661-74. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.117.312509

28. Metz R.P., Patterson J.L., Wilson E. Vascular smooth muscle cells: isolation, culture, and characterization. Methods Mol Biol Clifton NJ. 2012;843:169-76. doi: 10.1007/978-1-61779-523-7_16.

29. Weber S.C., Gratopp A., Akanbi S., Rheinlaender C., Sallmon H., BarikbinP., Koehne P.S. Isolation and culture offibroblasts, vascular smooth muscle, and endothelial cells from the fetal rat ductus arteriosus. Pediatr Res. 2011 Sep;70(3):236-41. doi: 10.1203/PDR.0b013e318225f748.

30. Radziwon-Balicka A., Degn M., Johansson S.E., Warfvinge K. , Edvinsson L. A novel multicolor flow-cytometry application for quantitative detection of receptors on vascular smooth muscle cells. PLOS ONE. 2017 Oct 30;12(10):e0186504. doi: 10.1371/journal.pone.0186504.


Для цитирования:


Шарыш Д.В., Марков А.В., Назаренко М.С. Получение клеточных суспензий артерий при атеросклерозе. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2020;9(2):114-122. https://doi.org/10.17802/2306-1278-2020-9-2-114-122

For citation:


Sharysh D.V., Markov A.V., Nazarenko M.S. Preparation of cell suspensionsfrom arteries affected with atherosclerosis. Complex Issues of Cardiovascular Diseases. 2020;9(2):114-122. (In Russ.) https://doi.org/10.17802/2306-1278-2020-9-2-114-122

Просмотров: 135


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2306-1278 (Print)
ISSN 2587-9537 (Online)